Mise à jour décembre, 2019
Les lignes directrices sur l’infection à Pasteurella ont été publiées pour la première fois dans le J Feline Med Surg 2013 ; 15 : 570-572 par Albert Lloret. La présente mise à jour a été rédigée par Tadeusz Frymus.
Synopsis
Pasteurella spp. fait partie de la flore normale des voies orales et respiratoires des chats. Cependant, ces bactéries sont fréquemment isolées d’abcès sous-cutanés félins, de pyothorax, de maladies des voies respiratoires ou d’autres affections, généralement comme agent secondaire. Le diagnostic n’est pas difficile, car Pasteurella se développe facilement dans les milieux de culture bactérienne couramment utilisés. Les pénicillines et les bêta-lactamines potentialisées sont les antibiotiques de première intention chez le chat comme chez l’homme. Les isolats félins sont également très sensibles aux quinolones.
Les morsures, les griffures ou même seulement un contact étroit peuvent transmettre Pasteurella spp à l’homme. Les signes d’une infection locale peuvent apparaître en 3 à 6 heures. Des infections sévères, des septicémies et des péritonites peuvent survenir chez les personnes immunodéprimées, et moins fréquemment chez les personnes immunocompétentes en contact avec des chats. La possession d’un chat par des personnes immunodéprimées peut comporter un risque.
Propriétés bactériennes
Pasteurella multocida, un coccobacille pléomorphe gram-négatif, anaérobie facultatif et non sporulé, est une bactérie commensale et fait partie de la flore naturelle du nasopharynx et des voies respiratoires supérieures du chat (Freshwater, 2008 ; Dolieslager et al, 2011).
Epidémiologie et pathogénie
Pasteurella multocida est un pathogène commensal ou opportuniste commun de la cavité buccale et/ou des voies respiratoires des chats (Wilson et Ho, 2013). Une étude a montré un état de portage de 90% dans les marges gingivales (Freshwater, 2008). La bactérie peut être impliquée dans la maladie en cas de préexistence ou de co-infection avec d’autres agents, ainsi que de façon secondaire à un traumatisme, une immunosuppression ou d’autres facteurs prédisposants.
Plusieurs espèces de Pasteurella ont été associées à des infections humaines, P. multocida subsp. multocida, P. canis, P. multocida subsp. septica, P. multocida subsp. gallicida, P. stomatis et P. dagmatis (Garniere et al, 1993 ; Wilson et Ho, 2013).
Présentation clinique
Maladie chez le chat
Pasteurella multocida est l’un des agents pathogènes les plus fréquents dans les plaies cutanées infectées et les abcès sous-cutanés (Roy et al., 2007). C’est également une bactérie courante impliquée dans les infections des voies respiratoires. Une analyse récente des bactéries isolées chez 231 patients félins souffrant d’infections des voies respiratoires dans différents pays européens a révélé que l’organisme le plus fréquemment trouvé était P. multocida (36,4 % de tous les isolats) (Moyaert et al., 2019). C’est également l’une des bactéries courantes à l’origine du pyothorax chez les chats (Ottenjann et al., 2008 ; Barrs et al., 2005 ; Walker et al., 2000). Pasteurella a été associée à un empyème spinal et à une méningo-encéphalomyélite (Messer et al., 2006 ; Granger et al., 2007). Une infection à Pasteurella spp. peut également résulter d’un cathétérisme urinaire dans le cas d’une obstruction urétrale féline (Cooper et al., 2019).
Diagnostic
Le diagnostic est établi sur la base d’une culture bactérienne à partir de tissus ou de sécrétions infectés. Pasteurella se développe facilement sur les milieux gélosés chocolat et sang de mouton, mais ne parvient pas à se développer sur la gélose MacConkey, le milieu habituel pour les bactéries Gram-négatives. Les souches sont généralement catalase-, oxydase-, indole- et saccharose-positives.
Traitement et prévention
Les pénicillines et les bêta-lactamines potentialisées (amoxicilline-clavunalate de potassium) sont des antibiotiques de première ligne pour le traitement des infections à Pasteurella (Roy et al., 2007 ; Freshwater, 2008 ; Perez Garcia et al., 2009). Les quinolones, les céphalosporines et les macrolides modernes sont également indiqués (Freshwater, 2008). Les 84 isolats de P. multocida provenant de chats souffrant d’infections des voies respiratoires en Europe étaient tous totalement sensibles à la pradofloxacine, et également très sensibles à l’enrofloxacine et à la marbofloxacine (Moyaert et al., 2019). Au Canada, près de 100 % des 309 isolats félins étaient sensibles au triméthoprime-sulfaméthoxazole, à la pénicilline, à l’enrofloxacine, à la doxycycline, à la céfovecine, à la céphalexine, à l’amoxicilline-clavulanate et à l’ampicilline, mais seulement 66 % à la gentamicine, 46 % à l’amikacine et 36 % à l’érythromycine (Awosile et al., 2018). Dans les cas graves, la décision thérapeutique doit être basée sur les tests de sensibilité aux antibiotiques.
Potentiel zoonotique
Les infections graves sont généralement observées chez les enfants, les femmes enceintes, les patients sous traitement immunosuppresseur chronique et les personnes immunodéprimées. Les maladies hépatiques chroniques et la cirrhose comportent un risque particulier de septicémie et de péritonite par Pasteurella spp. (Adler et al., 2011 ; Hey et al., 2012). Bien que la maladie grave apparaisse généralement chez les personnes immunodéprimées, environ un tiers des patients septicémiques étaient auparavant des personnes en bonne santé (Kimura et al., 2004).
Les morsures de chat s’infectent fréquemment (20 à 80 %), et P. multocida est la bactérie la plus fréquemment cultivée à partir de plaies de morsure infectées (Freshwater, 2008 ; Bula-Rudas et al., 2018). Outre les morsures, les griffures et les léchages, le contact étroit a également été suffisant pour l’infection. L’inhalation de gouttelettes de sécrétion provenant des voies respiratoires supérieures est une source possible d’infection (Kimura et al., 2004).
L’infection par P. multocida produit généralement une cellulite et/ou des abcès au site de la morsure ou de l’égratignure, habituellement 3 à 6 heures après l’inoculation (Westling et al., 2000 ; Perez Garcia et al., 2009). Occasionnellement, l’infection locale peut évoluer vers une fasciite nécrosante, une arthrite septique et une ostéomyélite (Layton, 1999).
L’infection respiratoire, la pneumonie et la bronchopneumonie sont également fréquentes, principalement chez les patients présentant une maladie pulmonaire préexistante (Perez Garcia et al, 2009).
Plus rarement, une infection disséminée peut produire une septicémie, qui peut entraîner un choc septique, une méningite, une endocardite, une péritonite, une arthrite et d’autres conséquences graves (Perez Garcia et al, 2009).
Une péritonite à Pasteurella par le biais d’un cathéter de dialyse après contact avec un chat a été rapportée (Rondon-Berrios et Trebejo-Nunez, 2010 ; Sol et al, 2012).
La prévalence élevée de la bactérie est une indication pour l’utilisation d’une antibiothérapie prophylactique (amoxicilline avec acide clavulanique) après une morsure de chat (Freshwater, 2008 ; Wilson et Ho, 2013).
Reconnaissance
L’ABCD Europe remercie Boehringer Ingelheim (le sponsor fondateur de l’ABCD) et Virbac pour leur soutien.
Adler AC, Cestero C, Brown RB (2011) : Choc septique dû à Pasteurella multocida suite à une morsure de chat : rapport de cas et revue de la littérature. Conn Med 75, 603-605.
Awosile BB, McClure JT, Saab ME, Heider LC (2018) : Antimicrobial resistance inbacteria isolated from cats and dogs from the Atlantic Provinces, Canada from1994-2013. Can Vet J 59(8), 885-893. PubMed PMID : 30104781 ; PubMedCentral PMCID : PMC6049328.
Barrs VR, Allan GS, Martin P, Beatty JA, Malik R (2005) : Pyothorax félin : une étude rétrospective de 27 cas en Australie. J Feline Med Surg 7, 211-222.
Bula-Rudas FJ, Olcott JL (2018) : Morsures humaines et animales. Pediatr Rev 39(10), 490-500. doi : 10.1542/pir.2017-0212. Révision. PubMed PMID : 30275032. Cooper ES, Lasley E, Daniels JB, Chew DJ (2019) : Incidence de la bactériurie atpresentation et résultant du cathétérisme urinaire dans l’uréthralobstruction féline. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2019 Jun 27. doi:10.1111/vec.12870. PubMed PMID : 31250535.
Dolieslager SM, Riggio MP, Lennon A, Lappin DF, Johnston N, Taylor D, Bennet D (2011) : Identification des bactéries associées à la gingivostomatite chronique féline à l’aide de méthodes dépendantes et indépendantes de la culture. Vet Microbiol 148, 93-98.
Freshwater A (2008) : Why your housecat’s trite little bite could cause you quite a fright : a study of domestic felines on the occurrence and antibiotic susceptibility of Pasteurella multocida. Zoonoses Public Health 55, 507-513.
Ganiere JP, Escande F, Andre G, Larrat M (1993) : Caractérisation de Pasteurella à partir de raclages gingivaux de chiens et de chats. Comp Immunol Microbiol Infect Dis 16, 77-85.
Granger N, Hidalgo A, Leperlier D, Gnirs K, Thibaud JL, Delisle F, Blot S (2007) : Traitement réussi d’un empyème épidural du rachis cervical secondaire à la migration d’une pelouse chez un chat. J Feline Med Surg 9, 340-345.
Hey P, Gow P, Torresi J, Testro A (2012) : Cirrhose, cellulite et chats : une combinaison « purrfect » pour une péritonite bactérienne spontanée de Pasteurella multocida menaçant le pronostic vital. BMJ Case Rep ; epub ahead of print.
Kimura R, Hayashi Y, Takeuchi T, Shimizu M, Iwata M, Tanahashi J, Ito M (2004) : Septicémie à Pasteurella multocida causée par un contact étroit avec un chat domestique : rapport de cas et revue de la littérature. J Infect Chemother 10, 250-252.
Layton CT (1999) : Méningite à Pasteurella multocida et arthrite septique secondaire à une morsure de chat. J Emerg Med 17, 445-448.
Messer JS, Kegge SJ, Cooper ES, Colitz CM, Abramson CJ (2006) : Méningo-encéphalomyélite causée par Pasteurella multocida chez un chat. J Vet Int Med 20, 1033-1036.
Moyaert H, de Jong A, Simjee S, Rose M, Youala M, El Garch F, Vila T, Klein U, Rzewuska M, Morrissey I (2019) : Enquête sur la sensibilité aux antimicrobiens des agents pathogènes bactériens isolés chez les chiens et les chats atteints d’infections des voies respiratoires enEurope : ComPath results. J Appl Microbiol127(1), 29-46. doi:10.1111/jam.14274. Epub 2019 16 mai. PubMed PMID : 30955231.
Ottenjann M, Lübke-Becker A, Linzmann H, Brunnberg L, Kohn B (2008) : Pyothorax chez 26 chats : signes cliniques, résultats de laboratoire et thérapie (2000-2007). Berl Munch Tierarztl Wochenschr 121, 365-373.
Perez García J, Candel González FJ, Baos Muñoz E, González Romo F, Picazo JJ (2009) : Cellulite après une morsure de chat. Rev Esp Quimioter 22, 221-223.
Rondon-Berrios H, Trebejo-Nunez GJ (2010) : Animaux domestiques ou nuisibles : péritonite liée à la dialyse péritonéale due à Pasteurella multocida. J Microbiol Immunol Infect 43:155-158.
Roy J, Messier S, Labrecque O, Cox WR (2007) : Efficacité clinique et in vitro de l’amoxicilline contre les bactéries associées aux plaies cutanées et aux abcès félins. Can Vet J 48, 607-611.
Sol PM, van de Kar NC, Schreuder MF (2012) : Péritonite à Pasteurella multocida induite par le chat dans le cadre d’une dialyse péritonéale : un rapport de cas et une revue de la littérature. Int J Hyg Environ Health ; epub ahead of print.
Walker AL, Jang SS, Hirsh DC (2000) : Bactéries associées au pyothorax des chiens et des chats : 98 cas (1989-1998). J Am Vet Med Assoc 216, 359-363.
Il n’y a pas d’erreur dans les résultats.